9.2
MECANISMOS DE TRANSFERENCIA ARTIFICIAL:
TRANSFORMACIÓN ARTIFICIAL
Muchas especies
bacterianas carecen de sistemas naturales de transformación. En los últimos
años se ha logrado desarrollar sistemas artificiales para producir “células
competentes” en algunas de ellas (como Escherichia coli, Salmonella typhimurium y algunas especies de Pseudomonas), lo cual ha hecho avanzar los estudios genéticos,
especialmente mediante manipulaciones in
vitro: por ejemplo, la transformación artificial de E. coli con ADN plasmídico es una de los métodos básicos de la
Ingeniería Genética.
La obtención de células
competentes en E. coli consiste en ir
concentrando un cultivo recogido en fase logarítmica, mediante lavados
sucesivos en una solución fría (4ºC) de Cl2Ca, tras lo cual la
mezcla de células y ADN se someten a unos 2 min. a 42ºC (choque por calor).
Este tratamiento altera las envueltas (sobre todo la membrana externa) y
aumenta su permeabilidad al ADN. Los plásmidos entran a la célula como
moléculas de cadena doble intactas, mientras que los ADN lineales, que entran
de la misma forma, son degradados por nucleasas citoplásmicas (RecBCD). Los
transformantes se suelen seleccionar en base a la resistencia a algún o algunos
antibióticos conferidos por los plásmidos artificiales usados en Ingeniería
Genética.
En otras bacterias (p.
ej., en ciertas Gram-positivas) el método consiste en obtener protoplastos en
medio hipertónico, y posterior tratamiento de éstos mezclados con el ADN con un
agente como el polietilénglicol, que fomenta la fusión de protoplastos y el
englobamiento de ADN exógeno.
Más recientemente se ha
introducido la técnica de la electroporación:
las células se someten a cortos pulsos de corriente eléctrica de alto voltaje,
lo cual altera las envueltas y permite la captación de ADN en una amplia
variedad de bacterias, tanto Gram-positivas como Gram-negativas.
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